НЕЙРО-МОТОРНЫЙ АППАРАТ ИКРОНОЖНОЙ МЫШЦЫ КРЫСЫ В УСЛОВИЯХ ФОРМИРОВАНИЯ КОМПЕНСАТОРНОЙ ИННЕРВАЦИИ

ВВЕДЕНИЕ
Повреждения периферических нервов остаются одной из актуальных проблем современной нейрохирургии и оказывают существенное влияние на качество жизни в связи с нарушением двигательной функции. Травматические повреждения нервных стволов конечностей встречаются преимущественно в молодом и среднем возрасте и, хотя не представляют угрозы для жизни больного, приводят к длительной потере трудоспособности, а в ряде случаев и к стойкой инвалидности.
Хирургическое восстановление нерва может быть осуществлено несколькими путями, такими как эпиневральный шов, метод хронического дозированного вытяжения нервного ствола и аутонервная пластика.
Применение автотрансплантатов (собственных участков нервов пациента) являются наиболее распространѐнной методикой заживления разрывов периферических нервов. Эффективным подходом для лечения неврологических заболеваний может оказаться трансплантация клеток, которые способны встроиться в поврежденную ткань и долговременно стимулировать восстановление этой ткани путем секреции нейротрофических и других факторов роста. Одним из доступных источников таких клеток оказалась жировая ткань.
Стромальные клетки жировой ткани способны дифференцироваться и секретировать ангиогенные и антиапоптотические [Rubinaetal., 2009], нейротрофические [Altmanetal., 1965; Reynoldsetal., 1992] и другие факторы роста [Kocsisetal., 2007].
Недавние исследования с использованием модельных экспериментов на животных указывают, что полученные из жировой ткани клетки обладают способностью восстанавливать мышцы после повреждения и стимулировать дифференцировку кровеносных сосудов в нервной ткани. В то же время, известно, что рост сосудов сопряжен с ростом нервов; эти процессы имеют общие сигнальные молекулы и механизмы регуляции [Лопатина, 2009].

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Акимов, Г.А. Современные представления о патогенезе, диагностике и лечении травматических поражений нервных стволов конечностей [Текст] / Г.А. Акимов, М.М. Одинак, С.А. Живолупов, С.Б. Силявин, Ю.Т. Шапков // Журн. невропат. и псих. им. С. С.Корсакова. - 1989.

- Т.89. - С.126-132.

2. Бабский,Е.Б. Физиология человека [Текст] / Е.Б. Бабский, В.Д. Глебовский, А.В. Коган и др. – М. : Медицина, 1985. – 544с. – ISBN 5-225- 04175-2.
3. Богданов, Э.И. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации [Текст] / Э.И. Богданов, Р.Р. Фасхутдинов // Журн. невропатол. и психиатр. - 1991.- Т. 91.- № 2.- С. 129-203.
4. Валиуллин, В.В. Нейротрофический контроль синтеза миозинов медленной мышцы морской свинки [Текст] / В.В. Валиуллин, Р.Р. Исламов // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1991.- Т.111.- № 2.- С. 201-203.
5. Волков, Е.М. Исследования нейротрофического контроля ионной проводимости мембраны фазных мышечных волокон лягушки [Текст] / Е.М. Волков, Г.А. Наследов, Г.И. Полетаев // Цитология.- 1981.- Т. 23.- № 7.- С. 803-810.
6. Волков, Е.М. Влияние pH на мембранный потенциал покоя мышечных волокон у лягушки [Текст] / Е.М. Волков // Физиол. ж. СССР.- 1983.- Т. 69.- № 9.- С. 1170-1175.
7. Волков, Е.М. Первичные постденервационные изменения электрогенных свойств мышечной мембраны у млекопитающих [Текст] / Е.М. Волков, Г.И. Полетаев, Х.С. Хамитов [и др.] // Успехи совр.биол.- 1987.- Т.104.- № 6.- С. 412-425.
8. Волков, Е.М. Молекулярные механизмы нейрональной регуляции ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1989б.- Т. 108.- № 4.- С. 80-94.

9. Волков, Е.М. Нейротрофический контроль Na – проницаемости мембраны мышечного волокна [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1990.- Т. 109.- № 3.- С. 339-351.
10. Григорович, К.А. Хирургическое лечение повреждений нервов [Текст] / К.А. Григорович. – Л. : Медицина, 1981. – 304с.
11. Жук, О.Н. Влияние фактора роста нервов на регенерацию волокон в седалищном нерве крыс [Текст] / О.Н. Жук, В.Н. Калюнов // Морфология. - 1996. - Т.110. - С.113-115.
12. Карагяур, М.Н. Влияние мезенхимальных стволовых клеток на восстановление периферического нерва после травмы [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / М.Н. Карагяур ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2013. – 24с.
13. Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2009. – 25 с.
14. Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2011. – 25 с.
15. Парфенова, Е.В. Поиск новых «инструментов» для терапевтического ангиогенеза [Текст] / Е.В. Парфенова, З.И. Цоколаева, Д.О. Трактуев и др // Молекулярная медицина. - 2006. - Т.2. - С.10-23.
16. Резвяков, Н.П. Гистохимическая характеристика белых и красных мышц в норме и при денервации [Текст] / Н.П. Резвяков // Архив анат., гистол. и эмбриол.- 1974.- Т. 66.- № 6.- С. 89-91.
17. Резвяков, Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц [Текст]: автореф. дис. ... д-ра мед.наук / Н.П. Резвяков. - Казань, 1982.- 23 с.

18. Трофимова, А.А. Использование аутонервной вставки для восстановления функций поврежденного седалищного нерва крысы [Текст] / А.А. Трофимова, А.М. Еремеев, Р.Ф. Масгутов, А.А. Богов // XXI Съезд физиологического общества им И.П.Павлова, Калуга, 2010 г. – C. 18.
19. Улумбеков, Э.Г. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон [Текст] / Э.Г. Улумбеков, Н.П. Резвяков; В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации мышц. - Л.: Наука, 1980.

- С. 84-104.

20. Altman, J. Post-natal origin of microneurones in the rat brain [Text] /

J. Altman, G.D. Das // Nature. - 1965. - P.953-6.

21. Ambron, R. Priming events and retrograde injury signals. A new perspective on the cellular and molecular biology of nerve regeneration [Text] / R. Ambron, E. Walters // Mol. Neurobiol.- 1996.- V. 13.- № 1.- P. 61-79.
22. Bayol, S. Phenotypic Expression of IGF Binding Protein Transcripts in Muscle, in Vitro and in Vivo [Text] / S. Bayol, P.T. Loughna, C. Brownson // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 2000.- V. 273.- № 1.- P. 282-286.
23. Bishop, D.L. The site effect on the mixed fibres in self-reinnervating flat muscles of a mouse [Text] / D.L. Bishop, R.L. Milton // Exp-Neurol.- 1997.- V. 147.- № 1.- P. 151-158.
24. Bowe, C.B. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text] / C.B. Bowe, Y.D. Kocsis// Dev. BraianPes. - 1987. - V.34. - P.123-131.
25. Bray, J.J. The membrane potential of rat diaphragm muscle fibers and the effect of denervation [Text] / J.J. Bray, M.J. Howken, J.J. Hubbard et al. // J. Physiol. - 1972. - V.255. -P.651-667.
26. Cancalon, P. The relationship of slow Axonal flow to nerve elongation and degeneration [Text]/ P. Cancalon// Advances in Neurochemistry. - 1984 - V.22. - Р.211-241.

27. Carbonetto, S. Nerve fiber growth in culture on tissue substrate from central and peripheral nervous systems [Text] / S. Carbonetto, D. Evans, P. Cochard // J. Neurosci.- 1987.- V. 7.- № 2.- P. 610-620.
28. Cheng, X. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text]/ X. Cheng // Dev. Braian. Pes.-1989.- V.34. - P.123-131.
29. Ciardelli, G.Materials for peripheral nerve regeneration [Text]/ G. Ciardelli,V. Chiono // Macromol. Biosci. - 2006. - №6. -P.13-26.
30. Cortright, R.N. Regulation of skeletal muscle UCP-2 and UCP-3 gene expression by exercise and denervation [Text] / R.N. Cortright, D. Zheng, J.P. Jones et al. // Am. J. Physiol.- 1999.- V. 276.- № 1.- P. 217-221.
31. De Angelis, C. Acetyl-L-carnitine prevents agedependent structural alterations in rat peripheral nerves and promotes regeneration following sciatic nerve injury in young and senescent rats [Text] / C. De Angelis, C. Scarfo, M. Falcinelli et al. // Exp. Neurol.- 1994.- V. 128.- P. 103-114.
32. De Vries, G.H. Schwann cell proliferation [Text]/ G.H. De Vries// Peripheral neuropathy. - Philadelphia: Saunders. 1993. - Р.290-8.
33. Evans, G.R. Peripheral nerve injury: a review and approach to tissue engineered constructs [Text]/ G.R. Evans // Anat. Rec. - 2001. - № 263.- P.396- 404.
34. Evans, G.R. Approaches to tissue engineered peripheral nerve [Text]

/ G.R. Evans // Clin Plastic. Surg. - 2003. - № 30. - P.559-63.

35. Fink, D.J. Retrograde axonal transport in rat sciatic nerve after nerve crush injury [Text] / D.J. Fink, D. Purkiss, M. Mata // Brain Res. Bull.- 1987.- V. 19.- № 1.- P. 29-34.
36. Finol, H.J. The effects of denervation on contractile properties or rat skeletal muscle [Text] / H.J. Finol, D.M. Lewis, R. Owens // J. Physiol.- 1981.- V. 319.- P. 81-92.
37. Gong, L. The effects of claudin 14 during early Wallerian degeneration after sciatic nerve injury [Text] / L. Gong, Y. Zhu, X. Xu, H. Li, W. Guo, Q. Zhao, D Yao // Neural regeneration research. – 2014. – P. 2151-8

38. Gutmann, E.Neurotrophic relation [Text] / E. Gutmann // Ann. Rev. Physiol.- 1976.- P. 177-216.
39. Gimble, J.M. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine [Text] / J.M. Gimble, A.J. Katz, B.A. Bunnell // Circ Res. - 2007. - V.100. - P.1249-60.
40. Hoffman, P.N. Changes in neurofilament transport coincide temporally with alterations in the caliber of axons in regenerating motor fibers [Text]/ P.N. Hoffman, G.W. Thompson, J. Grifin et al. // J. Cell Biol.- 1985. - V. 101.- P.1332- 1340.
41. Holubar, Y. The degeneration of peripheral fibers [Text] / Y. Holubar. - J.Newral., Newrosury and Psychiatry.- 1950.- V. 13.- № 2.- P. 89-105.
42. Hugh, G.Immunocytochemical analysis of myosin isoenzymes in denervated rat fast and slow muscles [Text] / G. Hugh, J.F.Y. Hoh // Proc. Austral. Physiol. and Pharmacol. Soc.- 1987.- V.18.- № 1.- P. 45.
43. Jakubiec-Puka, A. Contents of myosin heavy chains in denervated slow and fast rat leg muscles [Text] / A. Jakubiec-Puka, I. Ciechomska, J. Morga et al. // Comp. Biochem. Physiol. Biochem. Mol. Biol. - 1999.- V. 122.- № 3.- P. 355- 362.
44. Jewett, G.H. Motor activity patterns in rat soleus muscle after neonatal partial denervation [Text]/ G.H. Jewett, K.J. Walden // Neuromusc. Disor.

- 1985. - V.5. - P.179-186.

45. Kean, C.J. Dynamic properties of denervated fast and slow twitch muscle of the cat [Text] / C.J. Kean, D.M. Lewis, J.D. McGarrick // J. Physiol.- 1974.- V. 237.- № 1.- P. 103-113.
46. Kocsis, J.D. Schwann cells and their precursors for repair of central nervous system myelin [Text] / J.D. Kocsis, S.G. Waxman // Brain. - 2007. - V. 130. - P.1978-80.37-49.
47. Lewis, D.M. The effect of denervation on the mechanical and electrical responses of fast and slow mammalian twitch muscle [Text] / D.M. Lewis // J. Physiol.- 1972.- V. 222.- № 1.- P. 51-75.

48. Masayki,В. Electrophysiological study of regeneration from constricted ervefibres[Text]/ B. Masayki, K. Hideaki// Electromyogr. abdclin. Newrophisiol. - 1986. - V.26. - P.3-11.
49. Matysiak, G.R. Activity and motor units size in partially denervated rat medial gastrocnemius [Text] / G.R. Matysiak // J. Appl. Physiol.- 1986.- V. 76.- P. 2663-2671.
50. Meller, K. Early structural changes in the axoplasmic cytoskeleton after axotomy studied by cryofixation [Text] / K. Meller // Cell Tiss. Res.- 1987.- V. 250.- № 3.- P. 663-672.
51. Millesi, H. Peripheral nerve surgery today: turning point or continuous development? [Text]/ H. Millesi// J Hand Surg [Br]. - 1990. - №15. - P.28.
52. Moonen, G.Neurotrophic factors: past and future [Text] / G. Moonen,

B. Malgrange, J.M. Rigo et al. // Acta Neurol. Belg.- 1996.- V. 96.- № 3.- P. 203- 218.

53. Movaghar, B. Induced bone marrow stromal cells into Schwann cells by progesterone improved the outcome of transected sciatic nerve model [Text] /

B. Movaghar, T. Tiraihi, M. Javan et al. // J Neurosurg Sci. – 2015.

54. Murakami, T.Transplanted neuronal progenitor cells in a peripheral nerve gap promote nerve repair [Text]/ T. Murakami, Y. Fujimoto, Y. Yasunaga,

• Ishida,N. Tanaka, Y. Ikuta, M. Ochi// Brain Res. - 2003. -P.17-24.

55. Myckatyn, T. Stem cell transplantation and other novel techniques  for promoting recovery from spinal cord injury [Text] / T. Myckatyn, S.E. MacKinnon, J.W. McDonald // Transpl. Immunol. - 2004. - № 12. - P.343-58.
56. Nakagami, H. Adipose tissue-derived stromal cells as a novel option for regenerative cell therapy [Text] / H. Nakagami, R. Morishita, K. Maeda et al. // J AtherosclerThromb. - 2006. - V.13. - P.77-8.
57. Otto, D. Pharmacological effects of nerve growth factor and fibroblast growth factor applied to the transectioned sciatic nerve on neuron death in adult

dorsal root ganglia [Text]/ D. Otto, K.Unsicker,C. Grothe// Neurosci. Lett. - 1987.
- № 83. - P.156-60.

58. Raimondo, S. Schwann cell behavior after nerve repair by means of tissue-engineered muscle-vein combined guides [Text] / S. Raimondo, S. Nicolino,

16. Tos, B. Battiston, M.G. Giacobini- Robecchi, I. Perroteau, S. Geuna // J. Comp. Neurol. - 2005. - № 489. -P.249-59.

59. Rath, E.M. Impaired peripheral nerve regeneration in a mutant strain of mice with a Schwann cell defect [Text]/ E.M. Rath, D. Kelly, T.W. Bouldin, B. Popko // J.Neurosci. - 1995. - №15. -P.7228-37.
60. Rehman, J. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells [Text] / J. Rehman, D. Traktuev, J. Li et al // Circulation. - 2004. - V.109. - P.1292-8.
61. Reynolds, B.A. Weiss, Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system [Text] / B.A. Reynolds, S. Weiss // Science. - 1992. - P.1707-10.
62. Rubina, K. Adipose Stromal Cells Stimulate Angiogenesis via Promoting Progenitor Cell Differentiation, Secretion of Angiogenic Factors, and Enhancing Vessel Maturation [Text] / K. Rubina, N. Kalinina, A. Efimenko, T. Lopatina, V. Melikhova, Z. Tsokolaeva, V. Sysoeva, V. Tkachuk, Y. Parfyonova // Tissue Eng Part A. - 2009. - V.15. - P.2039-50.
63. Schlaepfer, W.W. Calcium-activated pro-tease and the regulation of the axonal cytoskeleton [Text]/ W.W. Schlaepfer, U. Zimmerman // Advances in Neurochemistry. – 1984. - V.22. - Р.261-273.
64. Sjoberg, J. Insulin-like growth factor (IGF-I) as a stimulator of regeneration in the freeze-injured rat sciatic nerve [Text]/ J. Sjoberg, M.Kanje // Brain Res. - 1989. - № 485. -P.102-8.
65. Sobol, J.B. Effects of delaying FK506 administration on neuroregeneration in a rodent model [Text] / J.B. Sobol, J.B. III Lowe, R.K. Yang,

S.K. Sen, D.A. Hunter, . E. Mackinnon// J. Reconstr. Microsurg. - 2003. - №19. - P.113-8.