Курсар - служба спасения студентов
Служба спасения для студентов (18+)

НЕЙРО-МОТОРНЫЙ АППАРАТ ИКРОНОЖНОЙ МЫШЦЫ КРЫСЫ В УСЛОВИЯХ ФОРМИРОВАНИЯ КОМПЕНСАТОРНОЙ ИННЕРВАЦИИ

Стоимость
2000 руб.
Содержание
Теория
Объем
41 лист.
Год написания

Описание работы

Работа пользователя Vseznayka1995
Добрый день! Уважаемые студенты, Вашему вниманию представляется дипломная работа на тему: «НЕЙРО-МОТОРНЫЙ АППАРАТ ИКРОНОЖНОЙ МЫШЦЫ КРЫСЫ В УСЛОВИЯХ ФОРМИРОВАНИЯ КОМПЕНСАТОРНОЙ ИННЕРВАЦИИ»
Оригинальность работы 78%

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ.................................................................................................... 3
  1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ............................................................................. 5
    1. Посттравматические процессы в двигательной системе, вызванные
повреждением нервного волокна.................................................................... 5
    1. Восстановление двигательной функции после повреждения нервного волокна       9
    2. Электрическая активность скелетных мышц........................................... 11
    3. Роль стромальных клеток в восстановлении нерва................................. 16
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ.......................................................... 19
  1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ................................................................ 19
  2. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ..................................................... 21
    1. Моторный (М-) ответ............................................................................... 21
    2. Рефлекторный (H-) ответ......................................................................... 27
    3. Отношение максимальных амплитуд рефлекторного и моторного ответов икроножной мышцы крысы при подсадке стромальных клеток................. 31
ВЫВОДЫ..................................................................................................... 34
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ      35
 
ВВЕДЕНИЕ
Повреждения периферических нервов остаются одной из актуальных проблем современной нейрохирургии и оказывают существенное влияние на качество жизни в связи с нарушением двигательной функции. Травматические повреждения нервных стволов конечностей встречаются преимущественно в молодом и среднем возрасте и, хотя не представляют угрозы для жизни больного, приводят к длительной потере трудоспособности, а в ряде случаев и к стойкой инвалидности.
Хирургическое восстановление нерва может быть осуществлено несколькими путями, такими как эпиневральный шов, метод хронического дозированного вытяжения нервного ствола и аутонервная пластика.
Применение автотрансплантатов (собственных участков нервов пациента) являются наиболее распространѐнной методикой заживления разрывов периферических нервов. Эффективным подходом для лечения неврологических заболеваний может оказаться трансплантация клеток, которые способны встроиться в поврежденную ткань и долговременно стимулировать восстановление этой ткани путем секреции нейротрофических и других факторов роста. Одним из доступных источников таких клеток оказалась жировая ткань.
Стромальные клетки жировой ткани способны дифференцироваться и секретировать ангиогенные и антиапоптотические [Rubinaetal., 2009], нейротрофические [Altmanetal., 1965; Reynoldsetal., 1992] и другие факторы роста [Kocsisetal., 2007].
Недавние исследования с использованием модельных экспериментов на животных указывают, что полученные из жировой ткани клетки обладают способностью восстанавливать мышцы после повреждения и стимулировать дифференцировку кровеносных сосудов в нервной ткани. В то же время, известно, что рост сосудов сопряжен с ростом нервов; эти процессы имеют общие сигнальные молекулы и механизмы регуляции [Лопатина, 2009].

В настоящее время полученные из жировой ткани клетки привлекают внимание как новый источник стимуляции восстановительного процесса после травмы нерва. Так же для ускорения процесса восстановления функций поврежденных нервов перспективным представляется использование ростовых факторов для стимуляции посттравматической регенерации поврежденных нервных проводников, например таких, как эндотелиальный фактор роста сосудов (vascularendothelialgrowthfactor – VEGF).
Цель данного исследования: оценка степени реиннервации икроножной мышцы крысы после травмы седалищного нерва при различных способах активации процессов регенерации нервной ткани
В соответствие с целью были поставлены следующие задачи:
1) Изучить функциональное состояние периферических отделов нейро
- моторного аппарата икроножной мышцы крысы после перерезки седалищного нерва и последующего наложения нервных анастомозов;
      1. Проанализировать функциональное состояние периферических отделов нейро - моторного аппарата икроножной мышцы крысы после перерезки седалищного нерва и последующего наложения нервных анастомозов с подсадкой клеток жировой ткани.
      2. Исследовать рефлекторную возбудимость мотонейронов икроножной мышцы крысы после перерезки седалищного нерва и последующего наложения нервных анастомозов с подсадкой клеток жировой ткани;
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
  1. Акимов, Г.А. Современные представления о патогенезе, диагностике и лечении травматических поражений нервных стволов конечностей [Текст] / Г.А. Акимов, М.М. Одинак, С.А. Живолупов, С.Б. Силявин, Ю.Т. Шапков // Журн. невропат. и псих. им. С. С.Корсакова. - 1989.
- Т.89. - С.126-132.
  1. Бабский,Е.Б. Физиология человека [Текст] / Е.Б. Бабский, В.Д. Глебовский, А.В. Коган и др. – М. : Медицина, 1985. – 544с. – ISBN 5-225- 04175-2.
  2. Богданов, Э.И. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации [Текст] / Э.И. Богданов, Р.Р. Фасхутдинов // Журн. невропатол. и психиатр. - 1991.- Т. 91.- № 2.- С. 129-203.
  3. Валиуллин, В.В. Нейротрофический контроль синтеза миозинов медленной мышцы морской свинки [Текст] / В.В. Валиуллин, Р.Р. Исламов // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1991.- Т.111.- № 2.- С. 201-203.
  4. Волков, Е.М. Исследования нейротрофического контроля ионной проводимости мембраны фазных мышечных волокон лягушки [Текст] / Е.М. Волков, Г.А. Наследов, Г.И. Полетаев // Цитология.- 1981.- Т. 23.- № 7.- С. 803-810.
  5. Волков, Е.М. Влияние pH на мембранный потенциал покоя мышечных волокон у лягушки [Текст] / Е.М. Волков // Физиол. ж. СССР.- 1983.- Т. 69.- № 9.- С. 1170-1175.
  6. Волков, Е.М. Первичные постденервационные изменения электрогенных свойств мышечной мембраны у млекопитающих [Текст] / Е.М. Волков, Г.И. Полетаев, Х.С. Хамитов [и др.] // Успехи совр.биол.- 1987.- Т.104.- № 6.- С. 412-425.
  7. Волков, Е.М. Молекулярные механизмы нейрональной регуляции ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1989б.- Т. 108.- № 4.- С. 80-94.
 
  1. Волков, Е.М. Нейротрофический контроль Na – проницаемости мембраны мышечного волокна [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1990.- Т. 109.- № 3.- С. 339-351.
  2. Григорович, К.А. Хирургическое лечение повреждений нервов [Текст] / К.А. Григорович. – Л. : Медицина, 1981. – 304с.
  3. Жук, О.Н. Влияние фактора роста нервов на регенерацию волокон в седалищном нерве крыс [Текст] / О.Н. Жук, В.Н. Калюнов // Морфология. - 1996. - Т.110. - С.113-115.
  4. Карагяур, М.Н. Влияние мезенхимальных стволовых клеток на восстановление периферического нерва после травмы [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / М.Н. Карагяур ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2013. – 24с.
  5. Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2009. – 25 с.
  6. Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2011. – 25 с.
  7. Парфенова, Е.В. Поиск новых «инструментов» для терапевтического ангиогенеза [Текст] / Е.В. Парфенова, З.И. Цоколаева, Д.О. Трактуев и др // Молекулярная медицина. - 2006. - Т.2. - С.10-23.
  8. Резвяков, Н.П. Гистохимическая характеристика белых и красных мышц в норме и при денервации [Текст] / Н.П. Резвяков // Архив анат., гистол. и эмбриол.- 1974.- Т. 66.- № 6.- С. 89-91.
  9. Резвяков, Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц [Текст]: автореф. дис. ... д-ра мед.наук / Н.П. Резвяков. - Казань, 1982.- 23 с.
 
  1. Трофимова, А.А. Использование аутонервной вставки для восстановления функций поврежденного седалищного нерва крысы [Текст] / А.А. Трофимова, А.М. Еремеев, Р.Ф. Масгутов, А.А. Богов // XXI Съезд физиологического общества им И.П.Павлова, Калуга, 2010 г. – C. 18.
  2. Улумбеков, Э.Г. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон [Текст] / Э.Г. Улумбеков, Н.П. Резвяков; В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации мышц. - Л.: Наука, 1980.
- С. 84-104.
  1. Altman, J. Post-natal origin of microneurones in the rat brain [Text] /
J. Altman, G.D. Das // Nature. - 1965. - P.953-6.
  1. Ambron, R. Priming events and retrograde injury signals. A new perspective on the cellular and molecular biology of nerve regeneration [Text] / R. Ambron, E. Walters // Mol. Neurobiol.- 1996.- V. 13.- № 1.- P. 61-79.
  2. Bayol, S. Phenotypic Expression of IGF Binding Protein Transcripts in Muscle, in Vitro and in Vivo [Text] / S. Bayol, P.T. Loughna, C. Brownson // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 2000.- V. 273.- № 1.- P. 282-286.
  3. Bishop, D.L. The site effect on the mixed fibres in self-reinnervating flat muscles of a mouse [Text] / D.L. Bishop, R.L. Milton // Exp-Neurol.- 1997.- V. 147.- № 1.- P. 151-158.
  4. Bowe, C.B. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text] / C.B. Bowe, Y.D. Kocsis// Dev. BraianPes. - 1987. - V.34. - P.123-131.
  5. Bray, J.J. The membrane potential of rat diaphragm muscle fibers and the effect of denervation [Text] / J.J. Bray, M.J. Howken, J.J. Hubbard et al. // J. Physiol. - 1972. - V.255. -P.651-667.
  6. Cancalon, P. The relationship of slow Axonal flow to nerve elongation and degeneration [Text]/ P. Cancalon// Advances in Neurochemistry. - 1984 - V.22. - Р.211-241.
 
  1. Carbonetto, S. Nerve fiber growth in culture on tissue substrate from central and peripheral nervous systems [Text] / S. Carbonetto, D. Evans, P. Cochard // J. Neurosci.- 1987.- V. 7.- № 2.- P. 610-620.
  2. Cheng, X. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text]/ X. Cheng // Dev. Braian. Pes.-1989.- V.34. - P.123-131.
  3. Ciardelli, G.Materials for peripheral nerve regeneration [Text]/ G. Ciardelli,V. Chiono // Macromol. Biosci. - 2006. - №6. -P.13-26.
  4. Cortright, R.N. Regulation of skeletal muscle UCP-2 and UCP-3 gene expression by exercise and denervation [Text] / R.N. Cortright, D. Zheng, J.P. Jones et al. // Am. J. Physiol.- 1999.- V. 276.- № 1.- P. 217-221.
  5. De Angelis, C. Acetyl-L-carnitine prevents agedependent structural alterations in rat peripheral nerves and promotes regeneration following sciatic nerve injury in young and senescent rats [Text] / C. De Angelis, C. Scarfo, M. Falcinelli et al. // Exp. Neurol.- 1994.- V. 128.- P. 103-114.
  6. De Vries, G.H. Schwann cell proliferation [Text]/ G.H. De Vries// Peripheral neuropathy. - Philadelphia: Saunders. 1993. - Р.290-8.
  7. Evans, G.R. Peripheral nerve injury: a review and approach to tissue engineered constructs [Text]/ G.R. Evans // Anat. Rec. - 2001. - № 263.- P.396- 404.
  8. Evans, G.R. Approaches to tissue engineered peripheral nerve [Text]
/ G.R. Evans // Clin Plastic. Surg. - 2003. - № 30. - P.559-63.
  1. Fink, D.J. Retrograde axonal transport in rat sciatic nerve after nerve crush injury [Text] / D.J. Fink, D. Purkiss, M. Mata // Brain Res. Bull.- 1987.- V. 19.- № 1.- P. 29-34.
  2. Finol, H.J. The effects of denervation on contractile properties or rat skeletal muscle [Text] / H.J. Finol, D.M. Lewis, R. Owens // J. Physiol.- 1981.- V. 319.- P. 81-92.
  3. Gong, L. The effects of claudin 14 during early Wallerian degeneration after sciatic nerve injury [Text] / L. Gong, Y. Zhu, X. Xu, H. Li, W. Guo, Q. Zhao, D Yao // Neural regeneration research. – 2014. – P. 2151-8
 
  1. Gutmann, E.Neurotrophic relation [Text] / E. Gutmann // Ann. Rev. Physiol.- 1976.- P. 177-216.
  2. Gimble, J.M. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine [Text] / J.M. Gimble, A.J. Katz, B.A. Bunnell // Circ Res. - 2007. - V.100. - P.1249-60.
  3. Hoffman, P.N. Changes in neurofilament transport coincide temporally with alterations in the caliber of axons in regenerating motor fibers [Text]/ P.N. Hoffman, G.W. Thompson, J. Grifin et al. // J. Cell Biol.- 1985. - V. 101.- P.1332- 1340.
  4. Holubar, Y. The degeneration of peripheral fibers [Text] / Y. Holubar. - J.Newral., Newrosury and Psychiatry.- 1950.- V. 13.- № 2.- P. 89-105.
  5. Hugh, G.Immunocytochemical analysis of myosin isoenzymes in denervated rat fast and slow muscles [Text] / G. Hugh, J.F.Y. Hoh // Proc. Austral. Physiol. and Pharmacol. Soc.- 1987.- V.18.- № 1.- P. 45.
  6. Jakubiec-Puka, A. Contents of myosin heavy chains in denervated slow and fast rat leg muscles [Text] / A. Jakubiec-Puka, I. Ciechomska, J. Morga et al. // Comp. Biochem. Physiol. Biochem. Mol. Biol. - 1999.- V. 122.- № 3.- P. 355- 362.
  7. Jewett, G.H. Motor activity patterns in rat soleus muscle after neonatal partial denervation [Text]/ G.H. Jewett, K.J. Walden // Neuromusc. Disor.
- 1985. - V.5. - P.179-186.
  1. Kean, C.J. Dynamic properties of denervated fast and slow twitch muscle of the cat [Text] / C.J. Kean, D.M. Lewis, J.D. McGarrick // J. Physiol.- 1974.- V. 237.- № 1.- P. 103-113.
  2. Kocsis, J.D. Schwann cells and their precursors for repair of central nervous system myelin [Text] / J.D. Kocsis, S.G. Waxman // Brain. - 2007. - V. 130. - P.1978-80.37-49.
  3. Lewis, D.M. The effect of denervation on the mechanical and electrical responses of fast and slow mammalian twitch muscle [Text] / D.M. Lewis // J. Physiol.- 1972.- V. 222.- № 1.- P. 51-75.
 
  1. Masayki,В. Electrophysiological study of regeneration from constricted ervefibres[Text]/ B. Masayki, K. Hideaki// Electromyogr. abdclin. Newrophisiol. - 1986. - V.26. - P.3-11.
  2. Matysiak, G.R. Activity and motor units size in partially denervated rat medial gastrocnemius [Text] / G.R. Matysiak // J. Appl. Physiol.- 1986.- V. 76.- P. 2663-2671.
  3. Meller, K. Early structural changes in the axoplasmic cytoskeleton after axotomy studied by cryofixation [Text] / K. Meller // Cell Tiss. Res.- 1987.- V. 250.- № 3.- P. 663-672.
  4. Millesi, H. Peripheral nerve surgery today: turning point or continuous development? [Text]/ H. Millesi// J Hand Surg [Br]. - 1990. - №15. - P.28.
  5. Moonen, G.Neurotrophic factors: past and future [Text] / G. Moonen,
B. Malgrange, J.M. Rigo et al. // Acta Neurol. Belg.- 1996.- V. 96.- № 3.- P. 203- 218.
  1. Movaghar, B. Induced bone marrow stromal cells into Schwann cells by progesterone improved the outcome of transected sciatic nerve model [Text] /
B. Movaghar, T. Tiraihi, M. Javan et al. // J Neurosurg Sci. – 2015.
  1. Murakami, T.Transplanted neuronal progenitor cells in a peripheral nerve gap promote nerve repair [Text]/ T. Murakami, Y. Fujimoto, Y. Yasunaga,
  • Ishida,N. Tanaka, Y. Ikuta, M. Ochi// Brain Res. - 2003. -P.17-24.
  1. Myckatyn, T. Stem cell transplantation and other novel techniques  for promoting recovery from spinal cord injury [Text] / T. Myckatyn, S.E. MacKinnon, J.W. McDonald // Transpl. Immunol. - 2004. - № 12. - P.343-58.
  2. Nakagami, H. Adipose tissue-derived stromal cells as a novel option for regenerative cell therapy [Text] / H. Nakagami, R. Morishita, K. Maeda et al. // J AtherosclerThromb. - 2006. - V.13. - P.77-8.
  3. Otto, D. Pharmacological effects of nerve growth factor and fibroblast growth factor applied to the transectioned sciatic nerve on neuron death in adult
 
dorsal root ganglia [Text]/ D. Otto, K.Unsicker,C. Grothe// Neurosci. Lett. - 1987.
- № 83. - P.156-60.
  1. Raimondo, S. Schwann cell behavior after nerve repair by means of tissue-engineered muscle-vein combined guides [Text] / S. Raimondo, S. Nicolino,
  1. Tos, B. Battiston, M.G. Giacobini- Robecchi, I. Perroteau, S. Geuna // J. Comp. Neurol. - 2005. - № 489. -P.249-59.
  1. Rath, E.M. Impaired peripheral nerve regeneration in a mutant strain of mice with a Schwann cell defect [Text]/ E.M. Rath, D. Kelly, T.W. Bouldin, B. Popko // J.Neurosci. - 1995. - №15. -P.7228-37.
  2. Rehman, J. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells [Text] / J. Rehman, D. Traktuev, J. Li et al // Circulation. - 2004. - V.109. - P.1292-8.
  3. Reynolds, B.A. Weiss, Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system [Text] / B.A. Reynolds, S. Weiss // Science. - 1992. - P.1707-10.
  4. Rubina, K. Adipose Stromal Cells Stimulate Angiogenesis via Promoting Progenitor Cell Differentiation, Secretion of Angiogenic Factors, and Enhancing Vessel Maturation [Text] / K. Rubina, N. Kalinina, A. Efimenko, T. Lopatina, V. Melikhova, Z. Tsokolaeva, V. Sysoeva, V. Tkachuk, Y. Parfyonova // Tissue Eng Part A. - 2009. - V.15. - P.2039-50.
  5. Schlaepfer, W.W. Calcium-activated pro-tease and the regulation of the axonal cytoskeleton [Text]/ W.W. Schlaepfer, U. Zimmerman // Advances in Neurochemistry. – 1984. - V.22. - Р.261-273.
  6. Sjoberg, J. Insulin-like growth factor (IGF-I) as a stimulator of regeneration in the freeze-injured rat sciatic nerve [Text]/ J. Sjoberg, M.Kanje // Brain Res. - 1989. - № 485. -P.102-8.
  7. Sobol, J.B. Effects of delaying FK506 administration on neuroregeneration in a rodent model [Text] / J.B. Sobol, J.B. III Lowe, R.K. Yang,
S.K. Sen, D.A. Hunter, . E. Mackinnon// J. Reconstr. Microsurg. - 2003. - №19. - P.113-8.
 
  1. Syrovy, I. Effect of exercise on skeletal muscle myosin ATP-ase activity [Text] / I. Syrovy, E. Gutmann, J. Melichna // Physiol. Bohemoslov.- 1972.- V. 21.- № 6.- P. 633-638.
  2. Terenghi, G. Peripheral nerve injury and regeneration [Text]/ G. Terenghi// Histol.Histopathol. - 1995. - №10. -P.709-18.
  3. Tohill, M.Stem cell plasticity and therapy for injuries of the  peripheral nervous system [Text]/ M. Tohill,G. Terenghi // Biotechnol. Appl. Biochem. - 2004. - №40. -P.17-24.
  4. Tower, S.S. Atrophy and denervation in skeletal muscle [Text] / S.S. Tower // Amer. J. Anat.- 1935.- V. 56.- P. 1- 44.
  5. Tower, S.S. The reaction of muscle to denervation [Text] / S.S. Tower
// Physiol. Rev.- 1939.- V. 19.- P. 1- 48.
  1. Waller, A.Eхperiments on the section of the glossopharyngeal and hypoglossal nerves of the frog and observations produced the reby in the structure of their primitive fibres [Text] / A. Waller // Philosoph. Trans. London.- 1850.- V. 140.- P. 423-429.
  2. Williams, L.R.Modification of fibrin matrix formation in situenhances nerve regeneration in silicone chambers [Text]/ L.R. Williams, S.Varon // J. Comp. Neurol. - 1985. - №231. -P.209-20.
  3. Zhang, D.Z. Transplantation of autologous adipose-derived stem cells ameliorates cardiac function in rabbits with myocardial infarction [Text] / D.Z. Zhang, L. Gai, H.W. Liu et al // Chin. Med. J. - 2007. - V.120. - P.300-7
  4. Zhou, L.N. Co-Graft of Bone Marrow Stromal Cells and Schwann Cells Into Acellular Nerve Scaffold for Sciatic Nerve Regeneration in Rats [Text] /
L.N. Zhou, J.W. Zhang, X.L. Liu et al. // J Oral Maxillofac Surg. – 2015. – P.00197-4
 

Сколько стоит помощь с учебной работой?